Estudio de la desinfección para la micropropagación in vitro de segmentos nodales de guanábana (Annona muricata L.)
DOI:
https://doi.org/10.29018/issn.2588-1000vol7iss50.2023pp1-13Palabras clave:
bacterias, contaminación, supervivencia, oxidación, guanábanaResumen
El cultivo de guanábana contribuye económicamente a pequeños y grandes productores, debido al aporte nutricional es muy apetecido para consumidores de la fruta. Las plantas perennes requieren de largos periodos de cultivo para la producción, en lo cual, la micropropagación permite obtener explantes sanos de guanábana. Aunque, existen problemas de contaminación fúngica, bacteriana, oxidación fenólica y baja supervivencia. Por ello, es importante realizar estudios que aporten a la desinfección de segmentos nodales para el establecimiento a nivel de laboratorio. Por tanto, el objetivo de este trabajo consistió en estudiar el establecimiento de segmentos nodales de guanábana en condiciones in vitro frente a desinfectantes a base de hipoclorito de sodio. La metodología utilizada fue descriptiva considerando factores a los tratamientos de desinfección y tiempo de exposición de los explantes. Los resultados señalan alta 87.12% a 100% contaminación fúngica. El menor porcentaje (12.5%) de contaminación bacteriana se logró con el 5%/5min de hipoclorito de sodio. Los segmentos presentaron bajo porcentaje de oxidación (12.5%) y la supervivencia fue superior al 62%. Se concluye que la contaminación de hongos es mayor que las bacterias, la supervivencia fue superior a los explantes no viables, la oxidación es independiente de la concentración de hipoclorito de sodio. Se sugiere el cuidado fitosanitario de plantas madre para disminuir la incidencia de contaminación in vitro de guanábana.
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Aguilar, L. P., Espino, H. S., Lorenzo, L., Montero, V., Perales, C., & Flores, S. (2016). a partir de segmentos nodales * In vitro propagation of guava ( Psidium guajava L .) from nodal segments Resumen Introducción. 7, 375–386.
Albany, N., Vilchez, J., León de Sierralta, S., Molina1, M., & Chacín, P. (2006). Una metodología para la propagación in vitro de Aloe vera L. Revista de La Facultad de Agronomía, 23 núm 2. https://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0378-78182006000200008
Azofeifa, Äa. (2009). Problemas de oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados in vitro. MESOAMERICANA, 20 Núm 1, 24. http://www.mag.go.cr/rev_meso/v20n01_153.pdf
Blake, J. (1987). Mites and thrips as bacterial and fungal vectors between plant tissue cultures. Bacterial and Bacteria-like. In Contaminants of Plant Tissue Cultures. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1988.225.17
Brubaker, J. (2021). Concentración de una solución luego de que ha sido disuelta con agua. Ehow. https://www.ehowenespanol.com/averiguar-concentraciones-luego-solucion-sido-disuelta-agua-como_220433/
Campos, J., Arteaga, M., & Campus, S. (2020). Establecimiento de un protocolo de desinfección y micropropagación in vitro de “caoba” Swietenia macrophylla King (Meliaceae). American School. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.13039/501100008443
Echenique, M., & Ayra, G. M. (2020). ( Annona muricata L .) EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL SAPECHO - BOLIVIA In vitro establishment of nodal segments of Guanabana ( Annona muricata L .) at the Sapecho Experimental Station - Bolivia. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales, 7, 62–68. http://www.scielo.org.bo/pdf/riiarn/v7n1/v7n1_a09.pdf
Flores-Mora, D., Jiménez-Bonilla, V., & Chacón-Cerdas, R. (2009). Cultivo de tejidos en Ficus carica con miniestacas. Agronomía Mesoamericana. https://www.redalyc.org/pdf/437/43713059012.pdf
García de la Rosa, R., Ramírez Ruz, C. M., & Sierra Ortega, T. M. (2005). Propagación in vitro de la especie frutícola de la Costa Caribe Guanábana (Annonamuricata) a partir de segmentos nodales [Universidad de Sucre]. https://repositorio.unisucre.edu.co/handle/001/655
Gómez, J., & Páez, J. (2005). Multiplicacion del helecho cacho de venado (Platycerium bifurcatum) in vitro mediante homogeneizacion de protalos e in vivo a partir de esporas [Universidad Central de Venezuela]. http://saber.ucv.ve/bitstream/10872/11836/1/TESIS PREGRADO.pdf
Hernández, Y., & Hernández, M. (2010). Efectos de la contaminación microbiana y oxidación fenólica en el establecimiento in vitro de frutales perennes. Cultivos Tropicales, 31 núm 4. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0258-59362010000400015
Jiménez-Terry, F., Barbón, R., La O, M., Pérez, M., Collado, R., & Acosta-Suárez, M. (2007). Efecto de la revigorización en el establecimiento in vitro de ápices y segmentos nodales de Cedrela odorata L. Biotecnología Vegetal. https://revista.ibp.co.cu/index.php/BV/article/view/356/html
Jimenez, A., Zhindón, B., Indacochea, B., & Ramos, M. (2017). Protocolos de desinfección de explantes durante la micropropagación de Cedrela odorata L. Revista Cienífica Multidisciplinaria. https://revistas.unesum.edu.ec/index.php/unesumciencias/article/view/14/15
Llanqui Velasco, E. (2011). Efecto del agua de coco en la micropropagación del plátano (Musa AAB) y banano (Musa AAA) en medios de cultivo sólido y líquido [Universidad Mayor de San Andrés]. https://repositorio.umsa.bo/handle/123456789/7713
Morón Rodríguez, F., Morón Pinedo, D., & Nodarse Rodríguez, M. (2010). Valoración de la evidencia científica para recomendar Annona muricata L. (guanábana) como tratamiento o prevención del cáncer. Revista Cubana de Plantas Medicinales. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1028-47962010000300009
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Wiley Online Library, 15, 473–497. https://doi.org/https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Olenka, M.-M., Palacio De la Cruz, A., Hilser, S.-M., Keila, S.-V., & Paucar-Menacho, L. M. (2022). Guanábana (Annona muricata L): Origen, características, cosecha, Postcosecha, actividad antioxidante, actividad antinflamatoria y beneficios para la salud. Agroindustria Science, Vol. 12 Nú. https://doi.org/https://doi.org/10.17268/agroind.sci.2022.01.14
Ramírez-Villalobos, M., Urdaneta, A., & León de Sierralta, S. (2002). Establecimiento in vitro de explantes adultos del guanábano (Annona muricata L.) tratados con hipoclorito de sodio. Revista de La Facultad de Medicina, 10(12), 9.
Ramirez, M., & Salazar, E. (1997). Establecimiento in vitro de segmentos nodales de guayabo (Psidium guajava L.). Revista de La Facultad de Agronomía de La Universidad de Zulia. https://www.revfacagronluz.org.ve/v14_5/v145z003.html
Roca, W., & Mroginski, L. (1991). Cultivo de tejido en la agricultura (Centro Int). https://www.google.com.ec/books/edition/Cultivo_de_tejidos_en_la_agricultura/EXijYNw55DUC?hl=es&gbpv=0
Shekafandeh, A., & Khosh-Khui, M. (2008). Effects of Bud Position and Culture Medium on Shoot Proliferation from Nodal Culture of Two Mature Guava Cultivars. Asian Journal of Plant Sciences. https://doi.org/10.3923/ajps.2008.177.182
Somarribas, G., Sandoval, J., & Müller, L. (1991). Propagación vegetativa in vitro del chayote (Sechium edule (Jacq.) Sw.). Fase de establecimiento. In CATIE. https://repositorio.catie.ac.cr/handle/11554/10374
Yildiz, M., & Er, C. (2002). The effect of sodium hypochlorite solutions on in vitro seedling growth and shoot regeneration of flax (Linum usitatissimum). Die Naturwissenschaften, 89(6), 259–261. https://doi.org/10.1007/S00114-002-0310-6
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